: Titanium platelets with a sand‐blasted and acid‐etched surface were coated with bovine serum albumin and incubated with a suspension of Porphyromonas gingivalis (ATCC 33277). Four groups with a total of 48 specimens were formed. Laser irradiation of the specimens (n=12) was performed on a computer‐controlled XY translation stage at pulse energy 60 mJ and frequency 10 pps. Twelve specimens were treated with an air powder system. After the respective treatment, human gingival fibroblasts were incubated on the specimens. The proliferation rate was determined by means of fluorescence activity of a redox indicator (Alamar Blue® Assay) which is reduced by metabolic activity related to cellular growth. Proliferation was determined up to 72 h. Contaminated and non‐treated as well as sterile specimens served as positive and negative controls. Proliferation activity was significantly (Mann–Whitney U‐test, P<0.05) reduced on contaminated and non‐treated platelets when compared to sterile specimens. Both on laser as well as air powder‐treated specimens, cell growth was not significantly different from that on sterile specimens. Air powder treatment led to microscopically visible alterations of the implant surface whereas laser‐treated surfaces remained unchanged. Both air powder and Er : YAG laser irradiation have a good potential to remove cytotoxic bacterial components from implant surfaces. At the irradiation parameters investigated, the Er : YAG laser ensures a reliable decontamination of implants in vitro without altering surface morphology. Résumé Le but de cette étude in vitro a été d'examiner la biocompatibilité de surfaces implantaires contaminées après traitement avec un laser Er: YAG et un système de poudre soufflée. Des petites plaques de titane avec surface mordançée et sablée ont été recouvertes avec de l'albumine sérique bovine et incubée avec une suspension de Porphyromonas gingivalis. Quatre groupes avec un total de 48 espèces ont été formés. L'irradiation laser des espèces (n=12) a été effectuée à l'aide d'un ordinateur contrôlant la translation dans l'axe XY à des énergies de 60 mJ et une fréquence de 10 pps. Douze espèces ont été traitées par un système de poudre soufflée. Après le traitement respectif, des fibroblastes gingivaux humains ont été incubés sur les spécimens. Le taux de prolifération a été déterminéà l'aide de l'activité de fluorescence d'un indicateur redox (Alamar Blue®) qui est réduit par l'activité métabolique en relation avec la croissance cellulaire. La prolifération a été déterminée pendant 72 h. Les spécimens contaminés et non‐traités ainsi que des stériles ont servi de contrôles positifs et négatifs. L'activité de prolifération était significativement réduite (test‐U de Mann‐Whytney, P<0.05) sur les petites plaques contaminées et non‐traitées comparée aux spécimens stériles. Tant sur les spécimens laser que sur ceux traités par poudre soufflée, la croissance cellulaire n'était pas significativement différente de celle observée sur les spécimens stériles. Le traitement par poudre soufflée apportait des altérations microscopiquement visibles de la surface implantaire tandis que les surfaces traitées par laser n'étaient pas altérées. Tant le système poudre soufflée que l'irradiation par le laser Er:YAG ont donc un bon potentiel à enlever les composants bactériens cytotoxiques des surfaces implantaires. Au niveau de l'irradiation utilisée le laser Er:YAG apporte une décontamination sûre des implants in vitro sans altérer la morphologie de surface. Zusammenfassung Das Ziel dieser in vitro Studie war es, die Biokompatibilität einer kontaminierten Implantatoberfläche nach der Behandlung mit einem Er:YAG‐Laser und einem Pulverstrahlgerät zu untersuchen. Man beschichtete sandgestrahlte und säuregeätzte Titanplättchen mit einem Albumin aus Rinderserum und inkubierte sie in einer Suspension von Porphyromonas gingivalis (ATCC 33277). Aus 48 Testplättchen bildete man vier Gruppen. Eine Gruppe (n=12) wurde auf einer komputerkontrollierten Vorrichtung einer Laserbestrahlung (gepulster Strahl mit einer Energie von 60 mJ und einer Frequenz von 10 pps) ausgesetzt. 12 weitere Testplättchen wurden mit einem Pulverstrahlgerät behandelt. Nach der entsprechenden Behandlung inkubierte man die Plättchen mit menschlichen Gingivafibroblasten. Die Proliferationsrate bestimmte man mit Hilfe der Fluoreszenzaktivität eines Redoxindikators (Alamar Blue® Assay), der durch die metabolische Aktivität beim Zellwachstum reduziert wird. Die Proliferation beurteilte man während 72 Stunden. Als positive und negative Kontrolle dienten sterile sowie kontaminierte und unbehandelte Plättchen. Die Proliferationsaktivität war bei den kontaminierten und unbehandelten, verglichen mit den sterilen Plättchen signifikant reduziert (Mann‐Whitney‐U‐Test, P<0.05). Sowohl bei den laser‐ wie auch bei den pulverstrahlbehandelten Plättchen war das Zellwachstum verglichen mit den sterilen Plättchen nicht signifikant anders. Die Pulverstrahlbehandlung führte zu mikroskopisch sichtbaren Veränderungen der Implantatoberflächen, währenddem die laserbehandelten Oberflächen keine Veränderung erfuhren. Sowohl die Pulverstrahlbehandlung, wie auch der Er:YAG‐Laser können das bakterielle Zytotoxine erfolgreich von der Implantatoberfläche entfernen. Mit den für diese Arbeit festgelegten Bestrahlungswerten liefert der Er:YAG‐Laser in vitro eine verlässliche Dekontamination der Implantate, und das ohne Veränderung der Oberflächenmorphologie. Resumen La intención del presente estudio in vitro fue examinar la biocompatibilidad de superficies de implantes contaminadas tras un tratamiento con un láser Er : YAG y un sistema de polvo por aire a presión. Se cubrieron placas de titanio con una superficie de pulverizada con arena y gravada con ácido con albúmina de suero bovino e incubada con una suspensión de P. gingivalis (ATCC 33277). Se formaron cuatro grupos con un total de 48 especímenes. Se llevó a cabo la irradiación por láser de los especímenes (n=12) en una fase de traslación XY controlada por ordenador con energía de pulso de 60 mJ y una frecuencia de 10 pps. Se trataron 12 especímenes con un sistema de polvo por aire a presión. Tras los tratamientos respectivos se incubaron fibroblastos humanos sobre los especímenes. Se determinó el índice de proliferación por medio de la actividad de fluorescencia de un indicador redox (Alamar Blue®) que se reduce por actividad metabólica relacionada con crecimiento celular. La proliferación se determinó hasta las 72 horas. Los especímenes contaminados y no tratados al igual que los especímenes estériles sirvieron de controles positivos y negativos. La actividad de proliferación fue significativamente (Mann–Whitney–U test, P<0.05) reducida en placas contaminadas y no tratadas al compararlas con los especímenes estériles. Tanto en los especímenes tratados con láser como en los tratados con polvo a presión el crecimiento celular no fue significativamente diferente de los especímenes estériles. El tratamiento con polvo a presión llevó a alteraciones microscópicamente visibles de la superficie del implante mientras que las superficies tratadas con láser permanecieron inalteradas. Tanto el polvo a presión como la irradiación por láser Er : YAG tuvieron un buen potencial para retirar los componentes bacterianos citotóxicos de las superficies de los implantes. Con los parámetros de irradiación investigados, el láser Er : YAG asegura una descontaminación fiable de los implantes in vitro sin alteración de la morfología de la superficie.